70. Quines són les precaucions per a la determinació del clor residual?
El clor és molt inestable en solució aquosa, especialment a baixes concentracions, i el contingut disminuirà ràpidament. La taxa de reducció del clor s’accelerarà quan s’exposi a la llum solar i a altres llums fortes o agitades. Per tant, la mostra no es pot emmagatzemar després del mostreig i la determinació del clor s’ha de començar immediatament, evitant l’exposició a la llum i l’agitació de la mostra d’aigua.
Totes les operacions durant el procés de determinació han d’evitar l’exposició directa a la llum del sol i el millor és dur a terme a la temperatura més baixa possible i a la llum suau. A més, tots els mètodes colorimètrics requereixen els blancs de color i turbiditat per compensar el color i la cromaticitat de l’aigua crua, sobretot quan la turbiditat i la cromaticitat són altes, s’ha de determinar el valor en blanc.
Quan s'utilitza el mètode colorimètric visual O-tolidina per determinar el clor residual, si la mostra d'aigua es barreja de manera uniforme amb la solució estàndard O-tolidina i, a continuació, el mètode colorimètric es realitza immediatament, el resultat mesurat és el clor residual lliure. Si la mostra d’aigua es col·loca en un lloc fosc durant 10 minuts per produir la cromaticitat més alta abans que es realitzi el mètode colorimètric, el resultat és el clor residual total. El clor residual total menys el clor residual lliure és el clor residual combinat.
Quan s’utilitza el mètode colorimètric visual O-tolidina per determinar, si el clor residual és gran, es produirà un color groc taronja; Si l’alcalinitat d’aigua és massa alta i el clor residual és petit, es produirà un color verd clar o un color blau clar. En aquest moment, es pot afegir 1 ml de solució estàndard O-tolidina per produir un color de color groc clar normal.
71. Quines diferències hi ha entre la fase biològica del mètode de biofilm i els fangs activats?
Les característiques de fase biològica del sistema de tractament de biofilm són diferents de les del procés de fangs activats, principalment en termes d’espècies microbianes i distribució.
En general, a causa del canvi gradual de la qualitat de l’aigua i la millora de les condicions ambientals per al creixement microbià, els tipus i les quantitats de microorganismes del sistema de biofilm són més que les del procés de fangs activats, i la cadena aliment Bacteris. Les algues poden aparèixer a les zones exposades a la llum solar i també poden aparèixer insectes com les mosques del filtre. Les característiques de distribució són que al llarg del gruix del biofilm (des de la superfície fins a l'interior) o la direcció del influent (temps de contacte diferent amb els influents), els tipus i quantitats de microorganismes mostren grans diferències. En la primera etapa del tractament en diverses etapes o de la part superior de la capa de farciment de flux descendent, el biofilm sovint està dominat per bacteris flocculents i el gruix de la pel·lícula també és relativament gran (2-3mm); Amb l’augment del nombre d’etapes o la part inferior de la capa de farciment de flux descendent, perquè la qualitat de l’aigua que contacta ha estat parcialment tractada, els bacteris més filamentosos, els protozous i les metazoa apareixeran gradualment al biofilm; Els tipus de microorganismes estan augmentant, però el gruix del biofilm disminueix constantment (1-2mm). Els microorganismes a la superfície del biofilm són tots aeròbics i, a mesura que augmenta el gruix, els microorganismes es converteixen gradualment facultatius o fins i tot anaeròbics.
El biofilm es fixa en el material o el farcit del filtre i el temps de retenció sòlid biològic SRT (edat de fangs) és llarg, de manera que pot créixer microorganismes amb un temps de generació llarg i una taxa de proliferació molt baixa, com ara bacteris nitrificants. També pot aparèixer un gran nombre de bacteris filamentosos al biofilm, però no es produirà el massís de fangs. En comparació amb el mètode de fangs activats, la proporció de nutrició animal en els organismes del biofilm és més gran, la taxa de supervivència dels micro-animals també és més elevada i pot habitar organismes de nivell alt de nutrients. Els oligochaetes i els insectes habiten per sobre dels ciliats, rotífers i nematodes depredadors. Per tant, la cadena alimentària del biofilm és més llarga que la cadena alimentària dels fangs activats, és per això que la quantitat de fangs produïts pel mètode de biofilm és inferior a la del mètode de fangs activats.
Els microorganismes característics de cada nivell o cada capa de farciment seran diferents a causa de la diferent qualitat de les aigües residuals, és a dir, els canvis en la qualitat de l’aigua provocaran canvis en els tipus i el nombre de microorganismes en el biofilm. Quan la concentració influent augmenta, es pot observar que els microorganismes característics del nivell original es mouen cap avall, és a dir, els microorganismes originalment al nivell frontal o la capa superior de farciment poden aparèixer al nivell posterior o a la capa inferior de farciment. Per tant, es poden observar canvis similars mitjançant l'observació de la fase biològica per inferir canvis en la concentració d'aigües residuals o la càrrega de fangs.
72. Quin és el significat de l’indicador de recompte bacterià total a l’aigua?
El nombre total de bacteris es refereix al nombre de colònies cultivades en 1 ml de mostra d’aigua en un medi d’agar nutritiu després de conrear -se a 37 ºC durant 24 hores. La unitat de mesura és generalment el nombre total de bacteris continguts a cada ml d’aigua. El nombre total de bacteris a l’aigua sovint està relacionat amb el grau de contaminació orgànica al cos d’aigua i és un dels indicadors importants per avaluar el grau de contaminació de l’aigua i els possibles danys al cos humà.
El mètode d’anàlisi del nombre total de bacteris utilitza el mètode de placa estàndard per comptar els bacteris a la mostra d’aigua, que és un mètode per determinar la densitat de bacteris heteròtrics anaeròbics aeròbics i facultatius a l’aigua. No obstant això, atès que cap base de nutrients ni cap condició ambiental pot complir els requisits fisiològics de tots els bacteris en una mostra d’aigua, i els bacteris en aigua poden existir en forma d’individus individuals, parells, cadenes, clústers o cúmuls, el recompte de colònies mesurats és realment inferior al nombre de bacteris que sobreviuen realment a la mostra d’aigua provada.
73. Quines són les precaucions per determinar el nombre total de bacteris?
Utilitzeu el mètode d’operació asèptica per absorbir 1 ml de mostra d’aigua o de 2 a 3 mostres d’aigua diluïda amb múltiples múltiples de dilució, injecteu -los a la placa esterilitzada, després aboqueu 15 ml de medi d’agar nutritiu i barregeu -ho bé amb la mostra d’aigua, feu dues mostres paral·leles per a cada mostra d’aigua i, a més
Després de la cultura, el recompte de colònies de plaques s’hauria de realitzar immediatament. Si s’ha d’ajornar el recompte, la placa es pot emmagatzemar en un entorn de 5-10OC, però no durant més de 24 hores, i aquesta pràctica no s’ha d’utilitzar com a mètode d’operació rutinària.
En comptar les colònies de la placa, podeu observar amb l’ull nu. Per evitar les omissions, utilitzeu una lupa per comprovar si cal. Per a aquelles colònies que semblen similars i s’apropen entre elles, però no es toquen, sempre que la distància sigui inferior al diàmetre de la colònia més petita, s’han de comptar per separat. Les colònies que estan en contacte estret, però tenen aparicions diferents (morfologia o color) també s’han de comptabilitzar per separat.
Quan es calcula el nombre mitjà de colònies de la mateixa dilució, si una de les plaques té grans colònies de flocs, no s’ha d’utilitzar i la placa sense colònies de floc s’hauria d’utilitzar com a recompte de colònies de la dilució. Si les colònies del floc són inferiors a la meitat de la placa i la distribució de les colònies restants és molt uniforme, el recompte de colònies d’1/2 de la placa amb un creixement uniforme es pot multiplicar per 2 per representar el recompte de colònies de tota la placa.
El resultat del recompte bacterià total és el nombre total de colònies a cada placa o el nombre mitjà de colònies en plaques experimentals paral·leles de la mateixa dilució multiplicada per la dilució múltiple. Quan el resultat final és de 100, el resultat es registra segons el nombre real de colònies; Quan és superior a 100, s’utilitzen dues xifres significatives i s’expressen com a exponent de 10. Si no es pot comptabilitzar el nombre de colònies, s’hauria de notar la dilució múltiple en informar del resultat.
74. Com calcular el nombre total de bacteris en una mostra d’aigua basada en el resultat del recompte de colònies?
Quan es calcula els resultats de la prova del nombre total de bacteris, cal comparar i calcular en funció del nombre mitjà de colònies a diferents dilucions. El mètode és el següent:
⑴ Primer, seleccioneu el cas en què el nombre mitjà de colònies estigui entre 30 i 300 per al càlcul. Quan el nombre mitjà de colònies a una sola dilució compleix aquest rang, el nombre mitjà de colònies multiplicades per la seva dilució múltiple s’utilitza com a resultat del nombre total de bacteris de la mostra d’aigua.
⑵ Si el nombre mitjà de colònies a dues dilucions és entre 30 i 300, el mètode de càlcul s’ha de determinar segons la relació de les dues. Si la proporció és inferior a 2, la mitjana del recompte mitjà de colònies multiplicat per la dilució múltiple s'ha d'utilitzar com a resultat del recompte bacterià total de la mostra d'aigua; Si la proporció és superior a 2, la menor del nombre mitjà de colònies multiplicat per la seva dilució múltiple s'ha d'utilitzar com a resultat del recompte bacterià total de la mostra d'aigua.
Si el nombre mitjà de colònies de totes les dilucions és superior a 300, el nombre mitjà de colònies de la dilució més gran multiplicada per la seva dilució múltiple s'ha d'utilitzar com a resultat del recompte bacterià total de la mostra d'aigua.
Si el nombre mitjà de colònies de totes les dilucions és inferior a 30, el nombre mitjà de colònies de la dilució més petita multiplicada per la seva dilució múltiple s'ha d'utilitzar com a resultat del nombre bacterià total de la mostra d'aigua.
Si el nombre mitjà de colònies de totes les dilucions no està entre 30 i 300, el recompte mitjà de colònies més proper a 30 o 300 multiplicat per la seva dilució múltiple s'ha d'utilitzar com a resultat del recompte bacterià total de la mostra d'aigua.
75. Quin és el significat del recompte coliforme (valor)?
Els bacteris coliformes fan referència a una classe de barres anaeròbiques aeròbiques o facultatives, fermentades de lactosa, gram-negatives i sense espores, de manera que de vegades també s’anomenen coliformes fecals o Escherichia coli. Els bacteris coliformes poden produir àcid i gas després de cultivar -se en medi de lactosa a 37 ºC durant 24 hores. El nombre (valor) dels bacteris coliformes es mesura generalment en el nombre de bacteris coliformes continguts en 1L o 100 ml d'aigua.
Si la font d’aigua està contaminada per femtes, pot estar contaminada per patògens intestinals i causar malalties infeccioses intestinals. Com que els patògens intestinals representen una proporció relativament petita del nombre de microorganismes, sovint és molt difícil separar els patògens de l’aigua, especialment l’aigua de l’aixeta. Els bacteris coliformes són el tipus de bacteris més comú i més gran entre els bacteris aeròbics intestinals, de manera que sovint s’utilitzen com a bacteris indicadors per a la contaminació fecal. És a dir, el nombre de bacteris coliformes a l’aigua s’utilitza per jutjar si la font d’aigua està contaminada per femtes i es detecta la possibilitat de inferir que la font d’aigua està contaminada per patògens intestinals.
76. Quins són els mètodes per determinar el nombre de bacteris coliformes?
Hi ha dos mètodes d'ús habitualment per determinar els bacteris coliformes totals: mètode de fermentació multi-tub i mètode de filtre de membrana.
El mètode de fermentació multi-tub es basa en les característiques dels bacteris coliformes com la fermentació de la lactosa, la tinció gramnegativa, les espores i les espores i les en forma de canya. Es prova a través de tres passos per determinar el nombre total de bacteris coliformes a la mostra d’aigua. El mètode de fermentació multi-tub utilitza el nombre més probable per expressar els resultats experimentals, també conegut com a MPN. En realitat és un mètode per estimar la densitat i la qualitat sanitària de E. coli en els cossos d'aigua basats en la teoria estadística. Aquesta estimació sol ser superior al nombre real. El valor estimat del recompte coliforme està determinat per la dilució que mostra resultats positius i negatius. En dissenyar el nombre de repeticions necessàries per a les proves de mostra d’aigua, s’ha de basar en la precisió de les dades requerides.
El mètode de filtre de membrana utilitza una membrana microporosa esterilitzada especial per filtrar la mostra d’aigua. Després que els bacteris quedin atrapats a la membrana, la membrana està unida al medi de cultiu de sulfit de sodi de Fuchsin per al cultiu. Com que els bacteris coliformes poden fermentar la lactosa, les colònies de color vermell morat amb brillantor metàl·lic apareixeran després del cultiu a la membrana del filtre. Comptant el nombre de colònies amb aquesta característica a la membrana del filtre, es pot calcular el nombre de bacteris coliformes continguts a cada litre de mostra d’aigua. El mètode de la membrana del filtre pot mesurar un volum més gran de mostres d’aigua i pot obtenir resultats més ràpid que el mètode de fermentació multi-tub, però l’efecte és pobre quan la turbiditat és alta i la densitat de no E. Els bacteris coli són alts.
77. Què és el clor residual?
El clor residual és el clor que queda a l’aigua després que l’aigua sigui desinfectada amb clor durant un període de temps determinat. La seva funció és mantenir la capacitat bactericida contínua. Des del moment en què l’aigua entra a la xarxa de canonades fins al punt d’aigua, s’ha de mantenir l’efecte del desinfectant a l’aigua per evitar possibles danys de patògens i tornar a creixement. Això requereix que la quantitat de desinfectant afegida a l’aigua no només hagi de satisfer les necessitats de matar patògens a l’aigua, sinó que també conservar una certa quantitat de quantitat residual per evitar el creixement dels patògens durant el procés de transport d’aigua. Si s’utilitza la desinfecció de clor, la part del desinfectant que supera les necessitats de desinfecció en aquell moment és clor residual.
El clor residual té dues formes: clor residual lliure (CL2, HOCL i OCl-) i clor residual combinat (NH2CL, NHCL2 i NCL3). Aquestes dues formes poden existir a la mateixa mostra d’aigua alhora, i la suma dels dos s’anomena clor residual total. El clor residual lliure té una forta capacitat bactericida, però és fàcil de descomposar -se. El clor residual combinat té una capacitat bactericida feble, però dura més temps a l’aigua. Generalment, quan no hi ha amoníac ni amoni a l’aigua, el clor residual és clor residual lliure, mentre que quan hi ha amoníac o amoni a l’aigua, el clor residual sol contenir només clor residual combinat i, de vegades, clor residual i coexista de clor residual combinat. La quantitat de clor residual ha de ser adequada. Massa baix no jugarà un paper en la prevenció i el tractament dels patògens. Massa alt no només augmentarà el cost de la desinfecció, sinó que també pot causar danys al cos humà quan estiguin en contacte amb el cos humà.
Conceptualment, el clor residual es refereix a desinfectants de sèries de gas i clor de clor. Quan s’utilitzen altres desinfectants no clor com el diòxid de clor, el clor residual s’ha d’entendre com el desinfectant restant que queda a l’aigua després d’un determinat període de contacte.
78. Quins són els mètodes per determinar el clor residual? Quins són els seus àmbits aplicables respectius?
La determinació del clor residual es pot dur a El mètode només pot determinar el clor residual total de la mostra d’aigua; El mètode de colorimetria visual O-tolidina pot determinar el clor residual total i el clor residual lliure respectivament canviant el procediment operatiu; El mètode de titulació o espectrofotometria de N-dietil-P-fenilendiamina pot determinar el clor lliure o el clor total en el rang de concentració de 0,03-5 mg/L, i canviant el procediment operatiu, la monocloramina, la dicloramina i alguns components de clor combinats també es poden determinar respectivament.
El mètode de titulació de iode és adequat per a mostres d’aigua amb un contingut total de clor residual superior a 1 mg/L, i és un mètode d’ús habitual per determinar la quantitat de clor afegit. El mètode colorimètric visual O-tolidina és senzill de funcionar i és un mètode comú per determinar el clor residual en aigua potable. El rang de mesurament és de 0,01-10 mg/L. El mètode de titulació o espectrofotometria de N-dietil-P-fenilendiamina o el mètode d’espectrofotometria té alta sensibilitat i pot determinar mostres d’aigua amb un baix contingut en clor residual. És adequat per determinar el clor total disponible en aigües residuals que contenen matèria orgànica. Els intervals de mesura dels dos mètodes són 0,05-1,5 mg/L i 0,03-5 mg/L, respectivament.